Santa Cruz公司產品Protocols及相關支持產品
Santa Cruz生物技術公司為*抗體提供了高品質的支持產品。包括用于WB和IHC的自產的第二抗體, 用于IP研究的發光試劑,瓊脂糖標記proteinA,proteinG PLUS和proteinL,用于WB的胞核提取,全細胞溶解物,組織提取試劑,WB膜,TransCruz凝膠遷移寡核苷酸,封閉物和實驗室常用試劑。 提供用于WB的Cruz MarkerTM分子量標準和預染分子量標準。ImmunoCruz染色系統用于IHC(石蠟切片)染色,為預稀釋,即用系統。還介紹一系列凋亡檢測試劑 盒。支持產品主要涵蓋以下方面:1)WB 2)IP 3)IP/WB 4)免疫復合蛋白激酶檢測 5)免疫過氧化物酶細胞染色 6)免疫熒光細胞染色 7)流式細胞技術(FCM)8)ELISA檢測 9)TransCruz凝膠超遷移實驗 10)用多肽中和抗體活性的方法 11)染色質免疫沉淀(ChIP)實驗 12)siRNA轉染 13)半定量RT-PCR 14)溶液配制。
1. WB
A.樣品準備
注意:細胞培養基產品包括經典和特殊培養基,血清,培養基添加物,誘導物,抗生素。產品列表請登陸www.scbt.com。
單層細胞
室溫下,移去培養基并用PBS沖洗直徑100mm的培養皿。以下步驟均在冰上或4℃操作,使用冰預冷的新鮮緩沖液。
加入0.6ml RIPA裂解液(sc-24948)。4℃輕輕晃動細胞培養皿15min。用細胞刮將貼壁細胞刮下。轉移裂解液至微量離心管內。
用0.3ml RIPA裂解液洗一次培養皿,將洗液與之前的溶解物合并。(可選擇:加入10μl 10mg/ml PMSF(sc-3597)儲存液和/或用21號注射器針頭切割DNA)冰上孵育30-60min。
將細胞溶解物4℃離心,10000×g,10min。轉移漢細胞裂解物的上清至新的離心管內,棄沉淀。
注意:涉及磷酸化作用研究時,可用PhosphoCruTM蛋白純化試劑盒(sc-24964)富集純化細胞溶解物中的磷酸化蛋白。
懸浮細胞
室溫低速離心5min,收集約2.0×107個細胞。小心除去培養基。
室溫下用PBS沖洗細胞沉淀,再次低速離心5min,小心除去培養基。
加入1.0ml冰預冷的RIPA裂解液(sc-24948),裂解液中現用現加入蛋白酶抑制劑和/或磷酸酶抑制劑。用移液器輕輕懸浮細胞,冰上孵育30min。
用21號注射器針頭、杜恩斯勻漿器或超聲進一步破壞使細胞均質化。注意不要使裂解物溫度過高。(可選擇:加入10μl 10mg/ml PMSF(sc-3597)儲存液。)冰上孵育30min。
將裂解液轉移至離心管,4℃離心,10000×g,10min。轉移上清至新的離心管內,棄去沉淀。
注意:涉及磷酸化作用研究時,可用PhosphoCruTM蛋白純化試劑盒(sc-24964)富集純化細胞溶解物中的磷酸化蛋白。
組織樣品
稱重組織塊,并用干凈的剃刀剪碎。冰凍組織可被切的很薄,并在含蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑的RIPA裂解液(sc-24948)中解凍。3ml冰預冷的RIPA/g組織。
杜恩斯勻漿器或超聲進一步破壞使細胞均質化,溫度維持在4℃。(可選擇:加入30μl 10mg/ml PMSF(sc-3597)儲存液/g組織。)冰上孵育30min。
將裂解液轉移至離心管,4℃離心,10000×g,10min。棄沉淀。可加長離心時間獲得更好的裂解產物。
注意:涉及磷酸化作用研究時,可用PhosphoCruTM蛋白純化試劑盒(sc-24964)富集純化細胞溶解物中的磷酸化蛋白。
B電泳
將樣品(每個泳道全細胞提取物40-60μg,胞核提取物10-20μg或10-20ng純化蛋白)與等體積2×電泳上樣緩沖液(sc-24945)混合,煮沸2-3min。未用完的樣品可保存在-20℃。
上樣,10μl/1.0mm×0.75mm孔。
推薦使用Cruz MarkerTM分子量標準(sc-2035)。小膠(0.75mm)每孔上樣2μl,大膠(1.5mm)每孔上樣5μl。如用與Cruz MarkerTM一致的第二抗體,可看到用于檢測試劑的內參條帶。也可選擇預染分子量標準(sc-2361)。
電泳步驟參考標準protocols。
根據廠家protocols,用電轉裝置將蛋白條帶轉移至NC膜或PVDF膜上。
注意:Cruz Blot SystemTM提供預制好的人或小鼠全細胞提取物和核提取物,或小鼠組織提取物。
C.Immunoblotting
用Blotto(BlottoA或B;用抗牛第二抗體時建議使用BSA)封閉膜上的非特異位點,室溫孵育30-60min。也可選擇用不含Tween-20的Blotto,在封閉容器內4℃過夜孵育。
如果使用的是磷酸化特異抗體,建議向封閉液和抗體稀釋液中加入50 mM NaF(NaF:sc-24988)抑制磷酸化酶。
封閉好的膜與*抗體(Blotto稀釋)稀釋液室溫孵育1小時。(如果是磷酸化特異抗體,要用加了50 mM NaF的Blotto稀釋液。)抗體*濃度根據滴度決定。建議起始稀釋度為0.5-2.0μg/ml。用TBST洗膜3次,5min/次。
將 膜與HRP或AP標記的第二抗體稀釋液(Blotto稀釋)室溫孵育45min,稀釋度1:500-1:2000。如果背景過高,第二抗體需進一步稀釋 (可達1:20000)。作ECL時,如果使用Cruz MarkerTM分子量標準(sc-2035),必須使用Cruz MarkerTM compatible secondary antibody作為可視化標準。
TBST洗膜3次,5min/次,然后TBS洗膜一次,5min。
將膜與化學發光試劑(sc-2408)孵育。如果發光化合物用于可見光檢測,必須用HRP標記的第二抗體。
2.IP
注意:本操作步驟可用于放射性或正磷酸鹽標記的細胞。(放射性物質的使用及處理應遵循適當的條例如OSHA和 NRC指導手冊。)細胞標記必須在無待標記氨基酸殘基或無磷酸鹽的培養基中進行。建議標記前使細胞處于適當的饑餓狀態。孵育培養細胞(100mm細胞培養 皿上約80-90%
單層細胞匯合或培養瓶內含約2-5×107個懸浮細胞)。通常,用傳代貼壁細胞或2-5×107個懸浮細胞可得到*標記。
例如:除去培養基,加入含5%透析胎牛血清和100μCi/ml35S-蛋氨酸的無蛋氨酸培養基。37℃孵育1h。某些蛋白需延長標記時間(18hrs)。有必要用PBS洗滌細胞除去未結合的放射物。
向單層傳代細胞中加入1-3ml冰預冷的RIPA(sc-24948),4℃孵育10min。對于懸浮細胞則向離心管中加入RIPA洗滌細胞沉淀。
用21號注射器針頭或超聲波反復裂解細胞。轉移裂解物至微量離心管中。
可選擇:用1.0ml冰預冷的RIPA沖洗細胞培養皿,與之前的合并處理。
4℃,10000×g離心10min。冰上轉移上清(細胞溶解液)至新的微量離心管。
預處理細胞溶解液,加入1.0μg的control IgG(與*抗體的種屬來源一致)和20μl懸浮的(25%v/v)瓊脂糖偶聯物(A蛋白-瓊脂糖,G蛋白-瓊脂糖,A/G蛋白-瓊脂糖,或L蛋白-瓊脂糖)。4℃孵育30min。
2500rpm(約1000×g),4℃離心30s。
轉移上清或約100-1000μg總細胞蛋白至微量離心管中。加入1-10μl(如0.2-2μg)*抗體(抗體濃度應滴定測定),4℃孵育1-2hrs。或者,可加入20μl*抗體瓊脂糖偶聯物,混勻,4℃孵育1hr-過夜;跳過下一步驟。
加入20μl適當的瓊脂糖偶聯物懸浮液(A蛋白-瓊脂糖,G蛋白-瓊脂糖,A/G蛋白-瓊脂糖,或L蛋白-瓊脂糖)。蓋好管子,4℃振搖孵育1hr-過夜。
2500rpm(約1000×g),4℃離心30s,收集免疫沉淀物,小心吸棄上清。
用1.0ml RIPA裂解緩沖液或PBS輕輕洗滌沉淀2-4次,每次重復以上離心步驟。
zui后一次洗滌后,小心吸棄上清,用40μl 2×電泳上樣緩沖液(sc-24945)重懸沉淀。
樣品煮沸2-3min,上樣電泳分離免疫復合物,通過放射自顯影觀察結果。未用完的樣品可保存在-20℃。
可選擇:煮沸后,樣品可經離心沉淀瓊脂糖顆粒,然后SDS-PAGE分析上清。
3.IP/WB
按照之前描述的WB程序準備總細胞溶解物。
注意:如進行磷酸化研究,溶解物可用Santa Cruz的PhosphoCruTM蛋白純化試劑盒(sc-24964)富集磷酸化蛋白。
預處理全細胞溶解物(可選擇步驟),約1ml全細胞溶解物或組織提取物,加入0.25μg適當的control IgG(與*抗體種屬來源一致)和20μl懸浮的(25%v/v)瓊脂糖偶聯物(A蛋白-瓊脂糖,G蛋白-瓊脂糖,A/G蛋白-瓊脂糖,或L蛋白-瓊脂 糖)。4℃孵育30min。
2500rpm(約1000×g),4℃離心30s。轉移上清(細胞溶解物)至干凈的微量離心管。
1ml細胞溶解物或約100-1000μg總細胞蛋白,加入10μl*抗體瓊脂糖偶聯物,混勻,4℃孵育1hr-過夜。
可 選擇:如無*抗體瓊脂糖偶聯物,1ml細胞溶解物加入1-10μl(如0.2-2μg)*抗體(抗體濃度應滴定測定),4℃孵育1-2hrs。加入 20μl適當的瓊脂糖偶聯物懸浮液(A蛋白-瓊脂糖,G蛋白-瓊脂糖,A/G蛋白-瓊脂糖,或L蛋白-瓊脂糖)。蓋好管子,4℃振搖孵育1hr-過夜。
2500rpm(約1000×g),4℃離心30s,收集免疫沉淀物,小心吸棄上清。
用1.0ml RIPA裂解緩沖液或PBS輕輕洗滌沉淀2-4次,每次重復以上離心步驟。
zui后一次洗滌后,小心吸棄上清,用40μl 2×電泳上樣緩沖液(sc-24945)重懸沉淀。
樣品煮沸2-3min。0.75mm×1.0mm的上樣孔上樣5-10μl。
電泳并按WB程序作免疫雜交。
注意:選擇不同的第二抗體,55kDa重鏈和27kDa輕鏈IgG,可檢測到*抗體。如果以上步驟中采用*抗體瓊脂糖偶聯物則*抗體條帶不明顯。
4.免疫復合蛋白激酶測定
從100mm細胞培養皿(單層細胞80-90%匯合)移除培養基,PBS洗一次。
加入1-3ml冰預冷的RIPA裂解緩沖液(sc-24948),4℃孵育10min。(注意:RIPA裂解緩沖液對某些激酶效果不好。需要優化裂解液成分來保持激酶活性。)
用21號注射器針頭反復抽吸使細胞破碎充分,轉移至15ml離心管中。
用1ml冰預冷的RIPA裂解緩沖液,0.5%Triton X-100(sc-29112)沖洗培養皿,與原裂解液合并。
10000×g,4℃離心10min。4℃轉移上清至新的離心管內。
轉移1.0ml細胞提取物(上清)至1.5ml離心管中。加入1-10μl(0.2-2μg)*抗體(抗體*濃度經滴定測定),4℃孵育1hr。
加入20μl適當的瓊脂糖偶聯物懸浮液((A蛋白-瓊脂糖,G蛋白-瓊脂糖,A/G蛋白-瓊脂糖,或L蛋白-瓊脂糖)。蓋好蓋子,4℃振搖孵育1hr-過夜。
2500rpm(約1000×g),4℃離心5min,收集免疫沉淀復合物。小心吸棄上清。
1.0ml /次RIPA或PBS洗沉淀4次,每次重復上述離心步驟。
20μl 適當的蛋白激酶緩沖液重懸沉淀(如50mM HEPES(sc-29097),0.1mM EDTA(sc-29092),0.01%BRIJ 35(sc-29087)),0.1mg/ml BSA,0.1% β-巰基乙醇(sc-29086),0.15M NaCl(sc-29108)。緩沖液成分根據所研究的激酶調整。
加入10-1000ng多肽底物。該底物/酶/細胞系的多肽底物濃度應根據經驗決定。
準備1ml ATP混合物:930μl適當的蛋白激酶緩沖液,6μl 50mM ATP,pH7.0,20μl 2.0 M MgCl2和44μl [γ32P]-ATP[10mCi/ml]。每個樣品加入10μl ATP混合物,30℃孵育30min。冰上放置。
加 入等體積2×電泳上樣緩沖液(sc-24945)終止反應,樣品煮沸2-3min。樣品可離心沉淀瓊脂糖微珠(可選擇);分析上清。跑SDS-PAGE, 通過放射自顯影觀察結果。未用完的樣品保存在-20℃。檢測中如用小肽底物,樣品必須通過閃爍計數或其他標準方法而不是SDS-PAGE來分析。
5.免疫過氧化物酶細胞染色
A. 組織培養細胞
在無菌的蓋玻片上培養細胞37℃過夜。PBS簡單沖洗后按以下程序之一固定細胞:
1)-10℃甲醇溶液5min,自然干燥(推薦方法);或
2)冰丙酮2min,自然干燥;或
3)1%甲醛-PBS 10min(保持濕潤)。
PBS洗三次。
可選擇:含0.1-1%過氧化氫的PBS孵育5-10min,淬滅內源過氧化物酶活性。PBS洗2次,5min/次。
B.冰凍組織切片
冰凍組織存放于液氮中。切片前(2周)可保存于-70℃。
95%乙醇清潔玻片,涂一薄層黏附劑,自然晾干。或使用預處理的玻片。
切片厚度4-10μm。室溫貼片。切片保存在-70℃。固定染色前室溫解凍切片。
注意:免疫組化切片固定劑清單包括Clarion和Crystal固定劑。
冰丙酮固定切片10min,冷藏。PBS洗三次。
可選擇:含0.1-1%過氧化氫的PBS孵育5-10min,淬滅內源過氧化物酶活性。PBS洗2次,5min/次。
注意:組織內有豐富的生物素(引起高背景染色),建議甲醛固定,遵循石蠟包埋組織切片protocol,因為石蠟包埋組織中內源性生物素被破壞。
C. 甲醛固定,石蠟包埋組織切片
按標準程序甲醛固定,石蠟包埋組織。
95%乙醇清潔玻片,涂一薄層黏附劑,自然晾干。或使用預處理的玻片。
切片厚度4-6μm。二甲苯脫蠟,3次,5min/次。依次過梯度酒精水化:100%乙醇,2次,10min/次,95%乙醇,2次,10min/次。去離子水浸洗1min。甩去切片上多余的液體。
可選擇:可做抗原修復。甲醛固定和石蠟包埋導致某些抗原決定簇被封閉,可按以下方法修復暴露抗原位點:
i. 熱修復(推薦方法):切片浸沒入10mM檸檬酸鈉緩沖液(sc-29109),pH6.0;或浸沒入含0.01% (w/v)EDTA(sc-29092)的50mM甘氨酸-HCl緩沖液(甘氨酸:sc-29096)中,pH3.5。95℃加熱5min。換新的緩沖 液,95℃加熱5min。(不同組織類型*孵育時間不同)。將切片放入緩沖液中冷卻約20min。用去離子水洗3次,2min/次。甩干切片。
ii. 胃蛋白酶:切片用含0.1%胃蛋白酶的0.01N HCl室溫孵育10-20min。去離子水沖洗幾次,甩去多余液體。
iii. 皂角苷:切片用含0.05%皂角苷的去離子水室溫孵育30min。PBS至少洗3次,甩去多余液體。
可選擇:切片在含0.1-1%過氧化氫的去離子水中孵育5-10min,淬滅內源過氧化物酶活性,PBS洗2次,5min/次。
注意:組織內有豐富的生物素(引起高背景染色),建議甲醛固定,遵循石蠟包埋組織切片protocol,因為石蠟包埋組織中內源性生物素被破壞。
D.免疫過氧化物酶染色
切片的免疫酶染色,建議用Santa Cruz的ABC染色試劑盒或ImmunoCruzTM染色試劑盒。ABC染色試劑盒利用親和素-生物素化辣根過氧化物酶復合物作為檢測物;而 ImmunoCruzTM染色試劑盒利用鏈親和素辣根過氧化物酶復合物作為檢測物,該體系包括所有預稀釋好的第二抗體,即用型,也包括預稀釋的*抗體。 所有染色體系中均有完整的protocol;以下為簡化版protocol。
所有反應步驟均于室溫下濕盒內完成。使用前試劑盒試劑要先恢復至室溫。操作中切片不能過干。每步操作完用吸引管吸除試劑,避免切片過干。要用足夠的反應液覆蓋標本(通常100μl/張切片就足夠了)。
ABC染色試劑盒
PBS稀釋的1.5%封閉血清孵育1hr。理想的封閉血清和第二抗體為同種屬來源。從切片上去除封閉血清。
滴加*抗體室溫孵育30min或4℃過夜孵育。抗體*反應濃度需經滴定確定;建議用含1.5%封閉血清的PBS稀釋至0.5-5.0μg/ml。PBS洗3次,5min/次。
滴加預稀釋的生物素化第二抗體或用含1.5%封閉血清的PBS稀釋至1μg/ml的生物素化第二抗體,孵育30min。PBS洗3次,5min/次。
滴加親和素生物素酶反應物,孵育30min。PBS洗3次,5min/次。
用提供的過氧化物酶底物孵育30s-10min或直至出現理想染色止。注意監控單張切片的恰當顯色時間。去離子水洗5min。可用蘇木素(sc-24973)復染5-10s。迅速用去離子水洗幾次。
梯 度酒精,二甲苯依次脫水:浸沒入95%乙醇2次,10s/次,然后100%乙醇2次,10s/次,zui后二甲苯3次,10s/次。擦掉多余的二甲苯。迅速加 1-2滴封片固定劑(如Clarion,sc-24942),蓋上蓋玻片(sc-24975),光學顯微鏡下觀察。
ImmunoCruzTM染色試劑盒
滴加1-3滴血清封閉液孵育20min。甩去封閉液。
迅速加入1-3滴預稀釋的*抗體。如果所用染色系統不含預稀釋的抗體,就把*抗體用血清封閉液稀釋至0.5-5.0μg/ml。孵育2hrs。PBS沖洗,然后切片浸沒入PBS內洗2次,2min/次。甩去多余的液體。
滴加1-3滴生物素化第二抗體,孵育30min。清洗同上步。
滴加1-3滴HRP-鏈親和素復合物,孵育30min。清洗同上步。
滴加1-3滴HRP底物混合物。顯色30s-10min,或直至出現理想染色止。去離子水沖洗,然后切片浸沒入去離子水內洗2次,2min/次。
復染,脫水,封片。(同ABC染色試劑盒)
6.免疫熒光細胞染色
切片準備同免疫酶染色,省去包括過氧化氫處理細胞在內的zui后一步。
每步操作完吸除反應液,但要避免樣品過干。用足夠的反應液覆蓋樣品(100-500μl/張切片)。
滴加含10%封閉血清-PBS,孵育20min,減少和IgG結合的非特異位點。理想的封閉血清和第二抗體為同種屬來源。從切片上去除封閉血清。
滴加*抗體,孵育60min。抗體*反應濃度應滴定決定;建議用含1.5%封閉血清的PBS稀釋至0.5-5.0μg/ml,PBS洗3次,5min/次。
滴加生物素標記或熒光染料標記的第二抗體(用含1.5%-3%封閉血清的PBS稀釋至1-5μg/ml),孵育45min。PBS洗3次。如果使用熒光染料標記的第二抗體,須暗室孵育,并省略下步。
滴加鏈親和素-熒光素,暗室孵育15min。鏈親和素標記物濃度需經滴定決定;建議PBS稀釋至10-20μg/ml。PBS充分洗凈。
用水相固定劑或90%甘油PBS溶液封片。
選擇適當的濾鏡在熒光顯微鏡下觀察。室溫避光保存切片(UltraCruzTM固片劑:sc-24941)或保存在4℃(甘油/PBS固片劑)。
7.流式細胞儀技術
細胞表面染色
準備細胞
1) 溶解血紅細胞。(注意:準備足夠的細胞用于10份樣品100μl/份檢測)。
1ml全血加入14ml恢復至室溫的1×FCM溶解液(sc-3621)中。
輕輕混勻,室溫孵育3-5min。不要超過5min。
離心5min,棄上清,預冷的5ml 1×PBS輕輕重懸沉淀。
離心5min,棄上清,預冷的1ml 1×PBS輕輕重懸沉淀。
2)準備培養細胞。(注意:本protocol通常處理50ml培養細胞。單層細胞,切勿胰酶消化!用0.2%EDTA/PBS溶液代替。1×PBS洗細胞1次。)
血球計數儀計數細胞。
1000rpm離心5min,棄上清,用足夠的1×PBS輕輕重懸沉淀至終濃度為1×107細胞/ml。
各管加入熒光染料標記的*抗體或isotype control。(20μl/106細胞。滴定抗體確定*濃度)。
每管加入100μl RBC溶解的全血或單細胞懸液。混勻,放在有蓋的冰盒內孵育15-30min。
每管加入1.5ml FCM沖洗緩沖液(sc-3624),顛倒混勻。1000rpm離心5min,棄上清,500μl 1%多聚甲醛重懸沉淀。
測讀分析數據。
細胞內染色
可用適當的活性物質刺激細胞。確保有未刺激細胞對照。
50ml離心管收集細胞。2000rpm離心5min,棄上清。
室溫1×PBS 20ml重懸細胞。
細胞計數。
2000rpm離心5min除去PBS。4℃1×PBS洗1次。2000rpm離心5min除去PBS。
每106個細胞加入1ml 4℃ FCM固定緩沖液(sc-3622),冰育15-30min。
4℃1×PBS洗細胞2次,離心,棄上清。
每106個細胞加入1ml -20℃ FCM滲透緩沖液(sc-3623),逐滴加入混懸。冰育15min。
離心;4℃ FCM沖洗緩沖液(sc-3624)。
2000rpm離心5min,棄上清。每107個細胞加入1ml FCM沖洗緩沖液,然后等分細胞(106)至各待測管中。
細胞內著染:各管加入熒光染料標記的*抗體或isotype control。室溫避光孵育1hr。
注意:為得到*結果應滴定熒光染料標記抗體。
1ml FCM沖洗緩沖液洗細胞2次, 500μl新鮮FCM沖洗緩沖液重懸。
24hrs內檢測分析。
8.ELISA檢測
包被微孔板,靶蛋白用50mM碳酸鹽包被液(pH9.0)稀釋。*包被濃度須經滴定,但純化抗原通常為1μg/ml,50μl/孔。封好,4℃過夜孵育。
棄凈液體。加入200μl/孔封閉液(含1%BSA和0.02%疊氮鈉的PBS)封閉非特異結合位點。室溫孵育1-2hrs或4℃過夜孵育。
棄凈液體。含0.02%疊氮鈉的PBS洗1次。濕潤的微孔條可用塑料密封袋密封,4℃保存4周。用前,棄凈多余的液體。
加入50μl/孔封閉液稀釋的待測樣品和對照。抗體需梯度稀釋測定滴度或用以前的工作濃度作篩選或半定量。室溫孵育1hr。
含0.05%Tween-20(sc-29113)的PBS洗板3次,棄凈液體。
加入50μl/孔封閉液稀釋的1:100-1:1000的堿性磷酸酶標記抗體。*抗體濃度需滴定決定。室溫孵育1hr。
棄凈液體。含0.05%Tween-20的PBS洗板3次,拍干,棄凈液體。
乙醇胺緩沖液(10mM乙醇胺,0.5mM MgCl2(sc-29098),pH9.5)洗1次,棄凈液體。
用乙醇胺緩沖液稀釋底物(PNPP,sc-3720)至終濃度1mg/ml。加入50μl/孔。反應10-20min直到陽性對照OD405/490讀數達1.0。加入50μl/孔0.1M EDTA,pH7.5終止反應。OD405/490讀數。
9、TRANSCRUZTM 超凝膠遷移檢測
用多聚核苷酸激酶將[γ32p]-ATP 標記到寡核苷酸上,達到50,000cpm/ng
準備膠遷移緩沖液:10mMTris,Ph7.5, 50mMNaCL,1mMDTT,1mM EDTA,5%甘油
準備20ul的反應混合物,將3-10ug核抽提物,和1ug多聚dIdC溶解在20ul膠轉移緩沖液中。加0.5ng標記的寡核苷酸探針,室溫孵育20分鐘。這組成了檢測DNA-蛋白復合物的對照樣品
為了檢測抗體遷移或封閉DNA-蛋白復合物,按步驟3準備反應混合物,每20ul反應體積加1-2ul TransCruzTM 超凝膠遷移抗體。一般是在加了探針之后,才加抗體,但在加探針前加入抗體,可使結果加強
通過4% 聚丙烯酰胺凝膠電泳(25-30ma),分開DNA和蛋白復合物。凝膠中含50mMTris,Ph7.5, 2mM EDTA,0.38M甘油.待膠干后,自動放射顯影查看結果
10、肽的中和
對所有的santa cruz的親和純化的兔或山羊的多抗和單抗,都有相應的封閉肽做對照。通過將抗體和封閉肽的預先孵育,抗體對抗原的結合可以被阻止。
決定zui高的抗體稀釋度,在這個稀釋度下,可以一直獲得理想的陽性結果。例如,H-Ras在免疫沉淀時,推薦的濃度是1ug/ml,但陽性結果是在50ng/ml。
封閉/競爭時,將抗體(抗體濃度按照以前提到的方法確定)和5倍重量的封閉肽混合在500ul的PBS中,室溫孵育2小時,或4度過夜。
封閉/競爭后,用封閉緩沖液稀釋抗體/封閉肽混合物,然后,按照所期望的實驗的操作進行。
11,染色質免疫沉淀
注意:CHIP的實驗步驟可以有很多不同版本,下面介紹的步驟適合大多數的實驗
常溫下,用PBS洗細胞,重懸細胞,使細胞數大約5*105個/ml(總細胞數2*107)。,
加甲醛,使終濃度為1%,室溫孵育10分鐘。
加甘氨酸至終濃度0.125M,終止交聯反應
2000rpm,5分鐘,離心細胞。用冷的PBS洗細胞一次
用6ml的裂解緩沖液重懸細胞,輕柔混合,2000rpm離心5分鐘,收集粗提的核提取物。
再用PBS洗沉淀,沉淀可以凍存,或繼續以下步驟。
用1.9ml的高鹽裂解緩沖液重懸沉淀,轉移到2ml的離心管中準備超聲
超聲條件需要優化,下面介紹的條件是在使用Sonics VC130和3mm的探頭的基礎上建立起來的:
在冰上操作,輸出功率設置5(R)6,每隔30秒超聲一次,共4次。
4°C,10,000rpm 離心15分鐘,保存上清,確定上清中蛋白的濃度。
如果免疫沉淀,我們推薦100—500ug蛋白和0.1—1ul的TransCruz試劑(0.2—2ug)
注意:研究者可能希望使用連接有葡聚糖或磁珠的一抗,以便于選擇后續免疫沉淀的試劑。有些情況下,將針對同一種蛋白不同表位的抗體聯合使用會更好。
向染色質溶液加50ul Protein A/G-瓊脂糖,4度,孵育30分鐘,使其澄清,zui大速度,4度離心5分鐘。
向上清中加一抗,4度孵育過夜。
加50ul Protein A/G –瓊脂糖,4度孵育2小時。
12,000rpm離心20秒收獲磁珠,并將管放在冰上
用1ml裂解緩沖液洗磁珠2次
用沖洗緩沖液洗磁珠四次
重懸磁珠在400ul洗脫緩沖液中
通過在67度水浴中孵育管子2小時以上,使反向交叉連接
離心去除磁珠,繼續在67度水浴孵育上清過夜 Remove
10,000rpm離心3分鐘去除殘留的珠子,保留上清
分離DNA,用500ul 酚/氯仿/異戊醇(25:24:1)抽提上清,劇烈振蕩,14,000rpm離心3分鐘分離兩相。
保留水相,用100ul10 mM Tris, 1 mM EDTA, pH 8.1 (TE) 反向抽提有機相一次,在匯集水相
用600ul 氯仿/異戊醇抽提匯集的水相
DNA可以用商業化的試劑盒濃縮。
12. siRNA小干擾RNA
轉染
*天:準備細胞
健康的細胞是成功轉染的要求,在轉染前明確細胞的生存狀態
對于貼壁細胞:
1,吸棄培養基,用胰蛋白酶、EDTA、或其他合適的方法分散細胞,在胰蛋白酶化前,用無菌的1X PBS漂洗細胞2次。
2,一旦細胞分散,用4倍體積的含10% 胎牛血清不含抗生素的生長培養基(如DEME,RMPI1640)稀釋懸浮液 。
(注意:這個階段使用不含抗生素的培養基是轉染成功的關鍵)
3,1,000 rpm離心5分鐘,去除培養基,用不含抗生素的培養基重懸沉淀
4,轉移細胞到12孔的細胞培養板 以便細胞過夜培養后,細胞覆蓋率達60-80%
(注意:細胞覆蓋率也是成功轉染的關鍵)
對于懸浮細胞:
1,1,000 rpm離心5分鐘
2,去除培養基,用不含抗生素的含10% 胎牛血清的培養基重懸沉淀
3,轉移細胞到12孔的細胞培養板或轉到多聚賴氨酸包被的8孔板中,以便細胞過夜培養后,細胞覆蓋率達60-80%
(注意:多聚賴氨酸包被是使懸浮細胞黏附到板底必須的)
第二天
準備轉染試劑和轉染
注意:對于不同的實驗目的有不同的操作步驟,請根據試驗需要選擇下面介紹的操作步驟。
對于蛋白和轉錄檢測
注意:當在組織培養板中進行不同劑量的siRNA轉染時,轉染試劑和siRNA轉染培養基的用量需要與不同孔的表面積成比率。
1,對每一次轉染,在一個無菌的小管里準備下面的混合物 這一步無關細胞培養類型
(A) 加3.6ul 10uM的siRNA到40ul siRNA轉染培養基中,輕柔混合,在室溫中放置15分鐘 (注意:如果需要低濃度的siRNA,用siRNA稀釋緩沖液進行稀釋)
(B)加2.4ul siRNA轉染試劑到40ul的siRNA轉染培養基中,輕柔混合,室溫放置5分鐘。
注意:雖然siRNA轉染試劑對許多細胞都有很高的轉染效率,但并不是適用于所有的細胞
2, 5分鐘后,混合A和B形成siRNA-siRNA轉染試劑混合物,輕柔混合,室溫孵育20分鐘。
3, 然后,向每個含有siRNA-siRNA轉染試劑混合物的管中加入0.32ml的siRNA轉染培養基,輕柔混合
對貼壁細胞:
4.1轉染前,吸棄培養基,用1ml無菌siRNA轉染培養基洗細胞一次,棄培養基。
4.2在洗過的細胞上,鋪稀釋的siRNA-siRNA轉染試劑混合物,37度,5-7小時
4.3孵育后,向含有轉染細胞的每個孔中加0.4ml 生長培養基,其中的血清和抗生素濃度是正常濃度的兩倍,無需去除轉染混合物。如果,毒性是個問題的話,去除轉染混合物,以正常生長培養基代替。再孵育18-24小時
4.4孵育結束后,用新鮮正常生長培養基替換,繼續孵育24-72小時
4.5從細胞中吸棄培養基,用1ml 1*PBS洗細胞一次,然后丟棄
4.6放置在冰上,向孔中加入300ul 1*電泳緩沖液,用移液器吹打,混勻。(注意:混合物可能變得粘稠)
如果進行Western blot的話,轉移混合物到15ml的錐形管中,放在冰上,對混合物進行超聲波降解,每15秒一次,用輸出功率的40%。如果,超聲后,起很多泡泡,1000轉/秒,離心3分鐘,然后,按照western blot的方法進行電泳,免疫印跡。
如果做轉錄分析,按照我們的半定量RT-PCR的操作進行。
對懸浮細胞
4.1在轉染前,1000轉/秒, 離心5分鐘收集細胞。去除培養基,用1ml 無菌的siRNA轉染培養基 。
4.2 再次離心1000轉/秒,5分鐘,去除培養基。用稀釋的siRNA-siRNA轉染試劑復合物重懸細胞。轉移細胞到12孔組織培養板,37°C孵育5-7小時,每次單獨轉染時重復。
4.3孵育后,加0.4ml含2倍正常血清和抗生物濃度的生長培養基到每個含被轉染細胞的孔中,不要去除轉染混合物。如果有毒性的話,去除轉染混合物,代替以正常生長培養基,在額外孵育18-24小時。
4.4一旦孵育結束,離心細胞,去除培養基。用新鮮的正常生長培養基重懸細胞。轉移細胞到12孔組織培養板,繼續孵育24-72小時。
如果 需要做western blot分析,則繼續以下步驟
轉 移混合物到15ml的錐形管中。將2*電泳上樣緩沖液用Milli-Q超純水稀釋到1* 。1000轉離心5分鐘,收集細胞,去除培養基,用1ml PBS洗細胞,重復一次,用300ul 1*電泳上樣緩沖液重懸細胞,放在冰上,對混合物進行超聲波降解,每15秒一次,用輸出功率的40%。如果,超聲后,起很多泡泡,1000轉/秒,離心3 分鐘,然后,按照western blot的方法進行電泳,免疫印跡。
如果需要轉錄分析,參照半定量RT-PCR步驟。
免疫熒光檢測
注意:當在組織培養板中進行不同劑量的siRNA轉染時,轉染試劑和siRNA轉染培養基的用量需要與不同孔的表面積成比率。
1,準備以下混合物:
(A)加1.8ul的10um siRNA到20ul 的siRNA轉染培養基中,輕柔混合,在室溫放置5分鐘 注意:如果需要低濃度的siRNA,用siRNA稀釋緩沖液稀釋
(B) 加1.2ul siRNA轉染試劑到20ul siRNA轉染培養基中,輕柔混合,室溫放置5分鐘。注意:雖然,對多種的細胞系有很高的轉染效率,但siRAN轉染試劑并不是對所有細胞都適合。
2,5分鐘后,混合A和B,形成siRNA-siRNA轉染試劑復合物,輕柔混合,室溫孵育20分鐘。
3,孵育后,加160ul siRNA轉染培養基到每個含有siRNA-siRNA轉染試劑復合物的管中,輕柔混合
從這一步起,對懸浮細胞和貼壁細胞的處理方法相同
4,轉染前,吸棄培養基,用0.3ml無菌siRNA轉染培養基洗細胞一次,去除培養基。
5,在洗過的細胞上,鋪稀釋的siRNA-siRNA轉染試劑混合物,37度,5-7小時
6,孵育后,向含有轉染細胞的每個孔中加200ul 生長培養基,其中的血清和抗生素濃度是正常濃度的兩倍,無需去除轉染混合物。如果,毒性是個問題的話,去除轉染混合物,以正常生長培養基代替。再孵育18-24小時
7,孵育結束后,用新鮮正常生長培養基替換,繼續孵育24-72小時
8,使用恰當的操作步驟檢測細胞,參見免疫熒光染色步驟
13,半定量RT-PCR
cDNA合成
準備試劑:1ul oligo(dT) 12-18(500 µg/ml)
1 ng-5 µg 總 RNA
1 µl 10 mM dNTPs
用不含RNA酶的去離子水補加到總體積12 µl
70℃ 孵育 5 分鐘,迅速放在冰上,再加入
4 µl 5x反轉錄酶緩沖液
2 µl 0.1 M DTT
1 µl RNase 抑制劑
42℃孵育 2 分鐘。
加1 µl 反轉錄酶(200 units)
42℃ 孵育 50 分鐘,然后,
在70℃孵育15 分鐘 終止反應
注意:作為優化的步驟,加1 µl RNase H (2 unit/µl)
37℃ 孵育20分鐘
*輪PCR 反應:
準備以下試劑
5 µl 10x PCR 緩沖液(含或不含MgCl2)
*5 µl 25 mM MgCl2 (調整不同的MgCl2濃度,推薦終濃度 2.5 mM)
1 µl 10 mM dNTP
1 µl 引物對 A
1 µl Taq DNA 聚合酶
2 µl cDNA 加水使體積達到50 µl
94℃孵育 2 分鐘,變性 cDNA.
進行的15–40 個循環的 PCR.退火和延伸反應是根據引物和模板情況依經驗而確定的。
第二輪 PCR 反應
準備以下試劑
5 µl 10x PCR 緩沖液(含或不含MgCl2)
*5 µl 25 mM MgCl2 (調整不同的MgCl2濃度,推薦終濃度 2.5 mM)
1 µl 10 mM dNTP
1 µl 引物對 B
1 µl Taq DNA 聚合酶
1–5 µl *次PCR 產物,并補加水到50 µl
94℃孵育 2 分鐘變性 cDNA.
進行的15–40 個循環的 PCR.退火和延伸反應是根據引物和模板情況依經驗而確定的。
PCR產物在瓊脂糖凝膠中,EB染色后可見。